小麦ふすまを用いたβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法及び液体培地
【課題】
キシランを含むセルロース資源の分解能力に優れたセルラーゼを低コストで製造すること。
【解決手段】
(a)炭素源として小麦ふすま、及び(b)窒素源としてアンモニア態窒素またはアミノ態窒素を含む液体培地を用いて、トリコデルマ属に属する微生物を培養する工程を包含するβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
キシランを含むセルロース資源の分解能力に優れたセルラーゼを低コストで製造すること。
【解決手段】
(a)炭素源として小麦ふすま、及び(b)窒素源としてアンモニア態窒素またはアミノ態窒素を含む液体培地を用いて、トリコデルマ属に属する微生物を培養する工程を包含するβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【0001】
本発明は、β−グルカナーゼ及びキシラナーゼを同時に高生産する製造方法及びその酵素を製造するに有用な液体培地に関する。
【背景技術】
【0002】
セルロース資源を有効利用するために、近年、セルロースを効率的に分解する方法が探索されている。自然界ではセルロースは主として微生物によって分解されており、細菌や糸状菌などの様々な微生物がセルロース分解酵素を生産することが知られている。
【0003】
これらの微生物は菌体外にセルロース分解酵素を分泌し、セルロースはその作用により、主に、セロオリゴ糖、セロビオースを経てグルコースへと分解される。セルロース分解酵素は、一般に、セルラーゼと呼ばれている。
【0004】
人工的にセルラーゼを製造しようとする場合、セルラーゼを分泌する微生物としては、トリコデルマ属が知られており、広く利用されている。そして、トリコデルマ属に属する微生物を炭素源及び窒素源などの栄養を含む培地を用いて培養し、セルラーゼを分泌させる方法も知られている。
【0005】
しかしながら、セルラーゼを製造するための従来の方法は、炭素源として使用できる材料や前処理方法に制限があり、高価な結晶セルロースであったり、仮に安価なセルロース資源であっても、加熱処理やアルカリ処理などの前処理を行う必要があり、比較的高いコストを要するものである。
【0006】
例えば、特許文献1は、古紙を硫酸第1鉄溶液中で蒸煮し、セルラーゼ生産菌を接種可能なセルラーゼ生産用基質を開示している。また、特許文献2は、微粉砕したバガスを苛性アルカリで蒸煮し、次亜塩素酸塩溶液で処理し、セルラーゼ生産菌であるトリコデルマ・リーセイを摂種可能なセルラーゼ生産用基質の製造方法を開示している。
【0007】
また、これら従来の方法で得られるセルラーゼは主としてβ−グルカナーゼを含み、キシラナーゼ活性は低く、バガス及び稲わら等のような、キシランが含まれるセルロース資源の分解能力に劣っている。そのため、天然に存在する多様なセルロース資源の有効利用という目的のためには効果が低い。
【0008】
特許文献3は、トリコデルマ・リーセイに属する変異株を液体培養し、得られたセルラーゼを採取する工程を含むセルラーゼの製造方法を開示している。培地の炭素源としては、セルロースパウダー、セロビオース、濾紙、一般紙類、オガクズ、ふすま、もみがら、バガス、大豆粕、コーヒー粕等化学構造や性質が異なる種々の材料が羅列されている(第0011段落)。
【0009】
しかし、これらのうち培養操作に実際に使用されているものはセロビオース(実施例1)及びアビセル(実施例2)のみであり、その他の材料、即ち天然セルロース材料についてはセルラーゼの生成が確認されていない。
【0010】
特許文献4は、固形構成成分の除去や非揮発成分の濃縮、濃縮物のオートクレーブ処理等の予備処理を行ったライムギの希薄アルコール蒸留廃液を用い、トリコデルマ属に属する微生物を培養してキシラナーゼを製造する方法を開示している。
【0011】
しかし、本技術で炭素源として用いられるライムギは入手が困難であり、更に複雑な前処理が必要であるために高いコストを要し、また、この方法ではβ−グルカナーゼの生成量が却って低下してしまう。
【0012】
他方、小麦ふすまは、小麦を製粉した際に残る小麦の表皮(外皮)である。小麦ふすまには、食物繊維が多く含まれており、シリアル等の食用にされる他、日本酒の醸造の際に麹菌を培養する個体培地に利用されている。
【0013】
また、小麦ふすまは、酵素の製造を目的として微生物を培養するのに用いる液体培地の原料としても利用されている。例えば、特許文献5には、液体培地の炭素源としてキシラン、キシランを含む小麦ふすま、パルプ、バガス、コーンファイバー、稲わら等の農産廃棄物または植物繊維等を用いることが記載されている。
【0014】
しかしながら、本技術では、培養される微生物がバチルス属に属する微生物である。さらに、生成する酵素はキシラナーゼであり、β−グルカナーゼの生成は確認されていない。
【0015】
つまり、トリコデルマ属に属する微生物を用いて、β−グルカナーゼ及びキシラナーゼを同時に高生産するための培地として小麦ふすまを利用することは、今まで知られていない。
【0016】
【特許文献1】特開2003−137901
【特許文献2】特公平5−33984号公報
【特許文献3】特開平9−163980号公報
【特許文献4】特開平11−113568号公報
【特許文献5】特開2004−121257
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【0017】
本発明は上記従来の問題を解決するものであり、その目的とするところは、キシランを含むセルロース資源の分解能力に優れたセルラーゼを低コストで製造することにある。
【課題を解決するための手段】
【0018】
本発明者らは、β−グルカナーゼ及びキシラナーゼを同時に高生産し、セルロース原料を分解(糖化)する酵素の製造方法及びその酵素を製造することを鋭意検討を重ねた結果、液体培地の原料として(a)小麦ふすま及び(b)アンモニア態窒素またはアミノ態窒素を用い、トリコデルマ属に属する微生物を培養することによるβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼを同時に高生産する製造方法及びその酵素を製造するために有用な液体培地を見出した。
【0019】
本発明は、(a)炭素源として小麦ふすま及び(b)窒素源としてアンモニア態窒素またはアミノ態窒素を含む液体培地を用いて、トリコデルマ属に属する微生物を培養する工程を包含するβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法を提供する。
【0020】
ある一形態においては、前記小麦ふすまの前記液体培地中における濃度が3%W/V以上である。
【0021】
ある一形態においては、前記小麦ふすまの前記液体培地中における濃度が4〜15%W/Vである。
【0022】
ある一形態においては、前記アンモニア態窒素またはアミノ態窒素の前記液体培地中における濃度が30〜660mMである。
【0023】
ある一形態においては、前記アンモニア態窒素またはアミノ態窒素の前記液体培地中における濃度が40〜580mMである。
【0024】
ある一形態においては、前記トリコデルマ属に属する微生物が、トリコデルマ・リーセイである。
【0025】
ある一形態においては、培養の過程において前記液体培地に対して炭素源が追加される。
【0026】
また、本発明は、(a)炭素源として小麦ふすま及び(b)窒素源としてアンモニア態窒素またはアミノ態窒素を含む液体培地であって、トリコデルマ属に属する微生物を培養するために用いられる液体培地を提供する。
【0027】
ある一形態においては、前記小麦ふすまは2%W/V以上含有される。
【0028】
ある一形態においては、アンモニア態窒素またはアミノ態窒素は30〜660mM含有される。
【0029】
また、本発明は、前記のいずれかに記載の方法により製造されたβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼを提供する。
【0030】
また、本発明は、前記β−グルカナーゼ及びキシラナーゼを用いることを特徴とするセルロース資源の分解または糖化方法を提供する。
【発明の効果】
【0031】
本発明は、小麦ふすまを有効利用して食品産業廃棄物を減少させるため、環境問題の解決に寄与する。また、セルロース分解酵素であるβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼが同時に高生産されるため、バガスや稲わら等の天然セルロース資源の糖化に極めて有用である。特に、セルロース資源からエタノールを製造するバイオマスエタノール製造に有用である。
【図面の簡単な説明】
【0032】
【図1】小麦ふすま5%の培地における、硫酸アンモニウムの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図2】小麦ふすま5%の培地における、塩化アンモニウムの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図3】小麦ふすま5%の培地における、燐酸二アンモニウムの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図4】小麦ふすま5%の培地における、ロイシンの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図5】小麦ふすま5%の培地における、尿素の濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図6】硫酸アンモニウム480mMの培地における、小麦ふすまの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図7】結晶セルロース1%の培地における、硫酸アンモニウムの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図8】硫酸アンモニウム160mMの培地における、結晶セルロースの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図9】小麦ふすま1%の培地における、硫酸アンモニウムの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図10】小麦ふすま5%の培地における、硫酸アンモニウムの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図11】実施例1で得られた小麦ふすま5%の培地及び参考例2で得られた結晶セルロース1%の培地のそれぞれの上清液を用いてビール粕を糖化した場合に、生成したグルコースの濃度を比較したグラフである。
【図12】実施例1で得られた小麦ふすま5%の培地及び参考例2で得られた結晶セルロース1%の培地のそれぞれの上清液を用いて稲わらを糖化した場合に、生成したグルコースの濃度を比較したグラフである。
【発明を実施するための最良の形態】
【0033】
液体培地
本発明の液体培地はセルロース分解酵素を生産する微生物、例えば、トリコデルマ属、アスペルギルス属、アクレモニウム属、スポロトリクム属、ペニシリウム属、タラロマイセス属、フミコラ属、ネオカリマスチクス属、サーモマイセス属又はクロストリディウム属、ストレプトマイセス属に属する微生物が生育する栄養を含んでいる。
【0034】
かかる液体培地は、以下の培地組成を水100mlに溶解及び懸濁した液体培地(一般に、マンデル培地と呼ばれる)を基に調整され、一般に、媒体として水、炭素源として小麦ふすま、及び窒素源としてアンモニア態窒素又はアミノ態窒素を含むものである。好ましい培地組成の一例を以下に示す。
【0035】
培地組成:
小麦ふすま:5g、(NH4)2SO4:0.14g、KH2PO4:1.5g、CaCl2・2H2O:0.03g、MgSO4・7H2O:0.03g、コーンスティープリカー:2mL、ツイーン80:0.1mL、微量元素液(H3BO4 6mg、(NH4)6Mo7O24・4H2O 26mg、FeCl3・6H2O 100mg、CuSO4・5H2O 40mg、MnCl2・4H2O 8mg、ZnSO4・7H2O 200mg液):0.1mL、水:100mLを含む(燐酸又は水酸化ナトリウムでpH4.8に調整)
【0036】
小麦ふすまとは、小麦の外皮と胚芽の混合物をいう。他方、小麦から小麦ふすま(即ち、外皮及び胚芽)を取り除いて微細化したものが小麦粉である。小麦ふすまは、例えば、工業的に食用小麦粉を得る製粉工程の副産物として大量に発生し、容易に入手することができる。そして、このような小麦ふすまは食品の製造副産物であるため、原料段階での品質検査および製造工程管理が厳しく行なわれていることから衛生品質に優れ安全であり、本発明の方法に用いるのに好ましい。
【0037】
小麦ふすまを調製するために用いる小麦の種類としては、特に限定はないが、ホクシン、ふくさやか、農林61号、ナンブコムギ、キタノカオリ、ハルユタカ、春よ恋などを挙げることができる。
【0038】
一般に、小麦ふすまの粒子形状は薄片状である。薄片状の小麦ふすまはそのまま用いてよい。また、これを適宜粉砕して粒子を細かくして用いることも、造粒して粒子の塊を形成させてから用いることも可能である。小麦ふすまの形態には、例えば、大ぶすま、小ぶすま、末粉などがある。食品原料及び健康食品等として市販されているものを用いてもよい。
【0039】
小麦ふすまは液体培地に導入する際に前処理を行ってもよい。好ましい前処理は、例えば、粉砕処理及び脱リグニン処理である。小麦ふすまからリグニンが除去されると強固な細胞壁が崩れ、容易にセルロースが利用できるようになり、酵素が生産され易くなるからである。また、小麦ふすまを粉砕処理することにより、脱リグニン処理をより効率的に行うことができる。
【0040】
脱リグニン処理の方法は特に限定されないが、例えば、水酸化ナトリウムのような強アルカリ性物質の存在下で、または硫酸や燐酸のような強酸性物質の存在下で高温に加熱して分解させる方法、微生物により分解させる方法、高温・高圧下で水熱処理により分解させる方法が挙げられる。処理設備や環境への負荷を考慮すると、高温・高圧下で水熱処理により分解させる方法が好ましい。
【0041】
また、加熱殺菌など液体培地の原料に対して通常行われる前処理を更に行ってもよい。
【0042】
小麦ふすまの液体培地中における濃度は3%W/V以上であることが好ましい。小麦ふすまの濃度が3%W/V未満であるとセルラーゼ、特にβ−グルカナーゼの生成量があまり増大しない場合がある。より好ましくは、小麦ふすまの液体培地中における濃度は4%W/V以上、更に好ましくは5%W/V以上、6%W/V以上、7%W/V以上、8%W/V以上である。
【0043】
液体培地中の小麦ふすまの濃度は高ければ高いほどよい。すなわち、その上限は、液体培地の撹拌混合を行なうことができる限度の量である。液体培地が撹拌できないと微生物は液体培地中に均一に混合されず、培養が正常に進行しないからである。液体培地中の小麦ふすまの濃度の上限は、攪拌装置の性能に応じて20、15、10又は8%W/Vでありうる。一般的には、上記濃度の好ましい範囲は4〜15%W/V、好ましくは5〜10%W/Vである。
【0044】
アンモニア態窒素とはアンモニア又はアンモニア由来のアンモニウム塩に含まれている窒素をいう。また、アミノ態窒素とはアミン又はアミン由来のアミノ化合物に含まれている窒素をいう。アンモニア態窒素又はアミノ態窒素を含む化合物は、例えば、硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、燐酸二アンモニウム、塩化アンモニウム、アンモニア水、尿素、アミノ酸およびその塩(例えば、ロイシン、グルタミン酸ナトリウム)である。
【0045】
これらのうち、窒素源として本発明の液体培地に用いるのに特に好ましい化合物は、硫酸アンモニウムである。その理由は、コストが低く入手が容易だからである。
【0046】
アンモニア態窒素又はアミノ態窒素の液体培地中における濃度は、アンモニウムのモル数として30〜660mMである。好ましくは、40〜580mMである。濃度が30mM未満であるとセルラーゼ、特にβ−グルカナーゼの生成量があまり増大しない場合がある。また、この濃度が660mMを超えると酵素の生産性が低下する。また、アンモニア態窒素又はアミノ態窒素の液体培地中における濃度は、液体培地中の小麦ふすまの濃度に応じて、増減させることが好ましく、例えば、小麦ふすまの濃度が3%W/Vである場合は、コスト等を考慮すると50mMが好ましい。
【0047】
β−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法
本発明に使用するトリコデルマ属に属する微生物はセルロースの糖化に必要なセルラーゼを生産するものであれば特に限定されない。好ましいトリコデルマ属に属する微生物はトリコデルマ属糸状菌であり、具体的にはトリコデルマ・リーセイ又はトリコデルマ・ビリデである。β−グルカナーゼ及びキシラナーゼを同時に高生産する点から、特に好ましくは、トリコデルマ・リーセイである。
【0048】
トリコデルマ・リーセイおよびトリコデルマ・ビリデの菌学的性質は、例えば、イー・ジー・シモンズ,アブストラクト・セカンド・インターナショナル・マイコロジカル・コングレス(E.G. Simmons, Abst. 2nd International Mycological Congress) 米国フロリダ州タンパ,1977年8月,618頁)に記載されている。
【0049】
液体培養には通常の通気撹拌培養装置が用いられ、上記液体培地を使用して、培養温度20〜33℃好ましくは、28〜30℃、培養pH4〜6で、4〜10日間培養する。培養の最初から上記液体培地を使用する場合は、液体培地に含まれる成分(例えば、炭素源及び窒素源)の濃度は、本発明の培養方法における上記成分の初期濃度に相当する。
【0050】
培養の過程において液体培地に対して炭素源を追加してもよい。培養の進行と共に培地中の小麦ふすまは分解されるため、炭素源を補うことによりセルラーゼの生成効率が向上する場合があるからである。追加する炭素源は、天然セルロースを含み、澱粉質等の栄養分が少ない材料が好ましい。追加するのに好ましい炭素源は、小麦ふすま、ビール粕、麦茶抽出粕、紙、果実の絞り粕(特にリンゴ絞り粕)などである。
【0051】
炭素源を追加する場合、追加の形態は連続式でも回分式でもよく、追加後も攪拌混合が可能であるように、追加の時期及び量を調節すればよい。
【0052】
炭素源を追加する場合、培養の過程において、アンモニア態窒素またはアミノ態窒素を必要に応じて、適宜追加してもよい。
【0053】
ついで、要すればこの培養液から遠心分離、濾過などの公知の方法によって菌体を除去して、トリコデルマ属糸状菌培養上清液が得られる。トリコデルマ属糸状菌培養液または培養上清液には目的とするセルラーゼ、すなわちβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼが高濃度で含まれている。
【0054】
得られる培養液または培養上清液のβ−グルカナーゼ活性は30U/mL以上、好ましくは50U/mL以上、より好ましくは60U/mL以上、更に好ましくは70U/mL以上である。また、この培養液または培養上清液のキシラナーゼ活性は25U/mL以上、好ましくは30U/mL以上、より好ましくは40U/mL以上、更に好ましくは50U/mL以上である。培養液または培養上清液のβ−グルカナーゼ活性、キシラナーゼ活性のいずれかが上記下限より低下すると、天然に存在する多様なセルロース資源の有効利用という目的に対する効果が低くなる。
【0055】
尚、上記ヘミセルラーゼ活性は、「oat spelts」由来のキシランを基質とした酵素加水分解により生成した還元糖をDNSと反応させ、540nmの吸光度の増加で定量することができる。
【0056】
より具体的には1%キシラン基質溶液(シグマ社製「Xylan, from oat spelts」を200mM酢酸緩衝液(pH4.5)に溶解)1.9mLに培養液または培養上清液0.1mLを加えて、40℃にて正確に10分間酵素反応を行なわせた後、DNS試薬(0.75%ジニトロサリチル酸、1.2%水酸化ナトリウム、22.5%酒石酸ナトリウムカリウム4水和物、0.3%乳糖1水和物を含む)4mLを加えてよく混合し、反応を停止する。反応停止液に含まれる還元糖量を定量するために、反応停止液を沸騰水浴中で15分間正確に加熱する。続いて、室温まで冷却した後、540nmの吸光度を測定することでキシロースに相当する還元糖量として定量する。1単位のヘミセルラーゼ活性は、40℃、10分間の反応条件下で、1分間に1μmolのキシロースに相当する還元糖を生成する酵素量として表す。
【0057】
本発明でいう「トリコデルマ属に属する微生物を培養する」とは、技術常識のとおり当該微生物を育成する操作をいう。つまり、β−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造を目的として液体培養を行う方法において、少なくとも上記本発明の液体培地の中でトリコデルマ属に属する微生物が育成する過程が存在すれば、その培養方法は本発明の方法に該当する。
【0058】
培養を行うと、液体培地の栄養はトリコデルマ属に属する微生物が消費するために減少する。それゆえ、培養の終期には培地中の炭素源や窒素源の濃度が所定の濃度未満になって、結果として本発明の液体培地に該当しない培地の中でトリコデルマ属に属する微生物が育成するかもしれない。かかる場合でも、例えば培養を開始した時点で、使用する液体培地が炭素源や窒素源を所定の濃度で含有する本発明の液体培地に該当しているときは、少なくとも培養の初期には本発明の液体培地の中でトリコデルマ属に属する微生物が育成するのであるから、その培養方法は当然本発明の方法に該当する。
【0059】
尚、このように特に培養の開始時点から炭素源を高含有させる場合は、上述のとおり、液体培地を攪拌混合する際の利便性を考慮して、小麦ふすまの濃度の上限をある程度制限することが好ましい。
【0060】
反対に、培養の初期には培地中の炭素源又は窒素源の濃度が所定の濃度より低く、本発明の液体培地に該当しない培地を用いて培養が行われていても、例えば、その後これらが追加されて培地中の炭素源又は窒素源の濃度が所定の濃度以上になった場合は、その後は本発明の液体培地の中でトリコデルマ属に属する微生物が育成するのであるから、その培養方法は本発明の方法に該当する。
【0061】
セルロース資源の分解または糖化方法
本発明の方法により得られたβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼは、セルロース資源を分解または糖化するのに有用である。ここでいうセルロース資源は、合成セルロースもしくは天然セルロース資源のどちらでも良い。合成セルロースとは、セルロース粉末として、流通しているものを表す。天然セルロース資源とは、バガス、稲わら、麦わら、ビール粕、木材などが挙げられる。本発明は、β−グルカナーゼおよびキシラナーゼを同時に高生産できるため、特に、バガス、稲わら、麦わら、ビール粕などの天然セルロース資源の糖化に優れている。
【0062】
セルロース資源の分解または糖化方法は、公知の方法を使用すればよく、特に制限されるものではないが、一例としては、基質としてセルロース資源を水性媒体中に懸濁させ、上記培養液または培養上清液を添加し、攪拌または振とうしながら、加温して糖化反応を行う方法が挙げられる。セルロース分解活性を示す上記培養液または培養上清液の代わりにその乾燥物、または乾燥物を水に分散もしくは溶解した液を用いてもよい。
【0063】
セルロース原料は、予め脱リグニンしておくことが好ましい。懸濁方法、攪拌方法、上記混合液の添加方法、添加順序、それらの濃度等の反応条件は、グルコースがより高収率で得られるよう適宜調整される。
【0064】
その際の、反応液のpH及び温度は、酵素が失活しない範囲内であればよく、一般的には、常圧で反応を行う場合、温度は30〜70℃、pHは3〜7の範囲でよい。また、この圧力、温度、pHについても、上記同様、グルコースがより高収率で得られるよう適宜調整されるものであるが、常圧で、酢酸またはリン酸緩衝液中で、温度50〜60℃、pH4〜6の範囲で行うことが好ましい。反応時間は一般に6〜147時間、好ましくは24〜72時間である。
【0065】
セルロースの糖化により、グルコースを含有する水溶液が得られる。得られた水溶液は、必要に応じて、脱色、脱塩、酵素除去等の精製処理を施すことができる。精製方法は、公知の方法であれば特に制限されないが、例えば、活性炭処理、イオン交換樹脂処理、クロマトグラフィー処理、精密ろ過、限外ろ過、逆浸透ろ過等の濾過処理、晶析処理等を使用してもよく、これらを単独で使用しても、2種以上を組み合わせてもよい。
【0066】
上記の方法で精製されたグルコースを主成分とする水溶液は、そのまま使用することができるが、必要に応じて、乾燥により固化させてもよい。乾燥方法は、公知の方法であれば特に制限されないが、例えば、噴霧乾燥、凍結乾燥、ドラム乾燥、薄膜乾燥、棚段乾燥、気流乾燥、真空乾燥等を使用してもよく、これらを単独で使用しても、2種以上を組み合わせてもよい。
【実施例】
【0067】
以下、本発明を実施例によってより具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【0068】
実施例1
小麦ふすま(昭和産業社製)を粉砕処理し、0.3N水酸化ナトリウム水溶液中で121℃、15分のオートクレーブ処理によるリグニンを除去し、充分水洗いした後、乾燥させた。
【0069】
トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させた。マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを脱リグニン処理した小麦ふすま5%(5g/100mL)に置き換えて、また窒素源である硫酸アンモニウムのアミノ態窒素のモル濃度がそれぞれ15mM、35mM、50mM、65mM、80mM、100mMまたは115mMになるように添加して燐酸または水酸化ナトリウムでpH4.8に調整した100mMの液体培地を500mL容バッフル付三角フラスコに用意した。培養したトリコデルマ・リーセイの1白金耳をこの液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、上清液のβ−グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。
【0070】
(酵素活性の測定)
前記で得られた培養液について酵素活性を測定した。
β-グルカナーゼ活性は、メガザイム社製のβ‐グルカナーゼ測定キットを用い、色素標識したβ-グルカンを基質とした酵素分解によって生じた染色断片を吸光度測定した。具体的には、アゾ大麦グルカン基質溶液0.1mLに培養液0.1mLを加えて、40℃にて正確に10分間酵素反応を行なわせた後、停止液〔4%酢酸ナトリウム、0.4%酢酸亜鉛、80%メチルセルソルブを含む(pH5)〕0.6mLを加えて5分放置し、反応を停止した。続いて遠心分離した後、上澄液を590nmの吸光度測定した。1単位のβ-グルカナーゼ活性は、40℃、10分間の反応条件下で、1分間に1μmolのグルコースに相当する還元糖を生成する酵素量として表した。
【0071】
次に、キシラナーゼ活性は、「oat spelts」由来のキシランを基質とした酵素加水分解により生成した還元糖をDNSと反応させ、540nmの吸光度の増加で定量した。より具体的には1%キシラン基質溶液[シグマ社製「Xylan,from oat spelts」を200mM酢酸緩衝液(pH4.5)に溶解]1.9mLに培養液0.1mLを加えて、40℃にて正確に10分間酵素反応を行なわせた後、DNS試薬(0.75%ジニトロサリチル酸、1.2%水酸化ナトリウム、22.5%酒石酸ナトリウムカリウム4水和物、0.3%乳糖1水和物を含む)4mLを加えてよく混合し、反応を停止した。反応停止液に含まれる還元糖量を定量するために、反応停止液を沸騰水浴中で15分間正確に加熱した。続いて、室温まで冷却した後、540nmの吸光度を測定することでキシロースに相当する還元糖量として定量した。1単位のキシラナーゼ活性は、40℃、10分間の反応条件下で、1分間に1μmolのキシロースに相当する還元糖を生成する酵素量として表した。結果を図1に示す。
【0072】
実施例2
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすま5%(5g/100mL)に置き換えて、また窒素源である硫酸アンモニウムを塩化アンモニウムに置き換えてアンモニア態窒素のモル濃度がそれぞれ20mM、40mM、50mM、60mM、80mM、100mMまたは120mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図2に示す。
【0073】
実施例3
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすま5%(5g/100mL)に置き換えて、また窒素源である硫酸アンモニウムを燐酸二アンモニウムに置き換えてアンミニア態窒素のモル濃度がそれぞれ15mM、35mM、50mM、65mM、80mM、100mMまたは115mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図3に示す。
【0074】
実施例4
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすま5%(5g/100mL)に置き換えて、また窒素源である硫酸アンモニウムをロイシンに置き換えてアミノ態窒素のモル濃度がそれぞれ8mM、15mM、23mM、31mM、38mM、46mMまたは53mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図4に示す。
【0075】
実施例5
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすま5%(5g/100mL)に置き換えて、また窒素源である硫酸アンモニウムを尿素に置き換えてアミノ態窒素のモル濃度がそれぞれ17mM、33mM、50mM、67mM、83mMまたは100mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図5に示す。
【0076】
実施例6
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすまに置き換えて濃度が1%、2%、3%、4%、5%、6%または7%になるように添加して、また窒素源である硫酸アンモニウムのアンモニア態窒素のモル濃度が480mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図6に示す。
【0077】
参考例1
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースの濃度を1%とし、窒素源である硫酸アンモニウムのアンモニア態窒素のモル濃度がそれぞれ15mM、35mM、50mM、65mM、80mM、100mMまたは115mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図7に示す。
【0078】
参考例2
マンデル培地の炭素源である結晶セルロース濃度が1%、1.5%、2%、2.5%、3%、3.5%または4%になるように添加して、また窒素源である硫酸アンモニウムのアンモニア態窒素のモル濃度が160mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図8に示す。
【0079】
参考例3
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすま1%(1g/100mL)に置き換えて添加して、また窒素源である硫酸アンモニウムのアンモニア態窒素のモル濃度がそれぞれ15mM、35mM、50mM、65mM、80mM、100mMまたは115mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図9に示す。
【0080】
実施例7
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすま5%(5g/100mL)に置き換えて、また窒素源である硫酸アンモニウムのアンモニア態窒素のモル濃度がそれぞれ330mM、420mM、500mM、580mM、660mM、720mMまたは800mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図10に示す。
【0081】
実施例8
実施例1で得られた培養上清液(5%小麦ふすま、アンモニア態窒素が100mMの硫安)および参考例2で得られた培養上清液(1%結晶セルロース、アンモニア態窒素が100mMの硫安)を用いて、セルロース原料の糖化試験を行った。糖化に供するセルロース原料としては、ビール粕及び稲わらを準備した。これらのセルロース原料は、以下の方法で脱リグニン処理を行った。
【0082】
セルロール原料を微粉砕し、0.3NのNaOHに懸濁して、120℃、15分間処理し、水で充分に洗浄後、乾燥した。セルロース原料の糖化は、セルロース原料:0.3g、培養上清液:9.5mL、1M酢酸バッファー(pH4.8):0.2mLからなる液(セルロース原料3%液)を50℃、pH4.8、48時間、振とうさせて糖化し、生成したグルコースをグルコースCII-テストワコー(和光純薬工業)で測定した。結果を図11および図12に示す。
【産業上の利用可能性】
【0083】
バガスや稲わら等の天然セルロース資源の糖化に極めて有用なβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼを同時に高生産でき、セルロース資源からエタノールを製造するバイオマスエタノール製造に利用できる。
【技術分野】
【0001】
本発明は、β−グルカナーゼ及びキシラナーゼを同時に高生産する製造方法及びその酵素を製造するに有用な液体培地に関する。
【背景技術】
【0002】
セルロース資源を有効利用するために、近年、セルロースを効率的に分解する方法が探索されている。自然界ではセルロースは主として微生物によって分解されており、細菌や糸状菌などの様々な微生物がセルロース分解酵素を生産することが知られている。
【0003】
これらの微生物は菌体外にセルロース分解酵素を分泌し、セルロースはその作用により、主に、セロオリゴ糖、セロビオースを経てグルコースへと分解される。セルロース分解酵素は、一般に、セルラーゼと呼ばれている。
【0004】
人工的にセルラーゼを製造しようとする場合、セルラーゼを分泌する微生物としては、トリコデルマ属が知られており、広く利用されている。そして、トリコデルマ属に属する微生物を炭素源及び窒素源などの栄養を含む培地を用いて培養し、セルラーゼを分泌させる方法も知られている。
【0005】
しかしながら、セルラーゼを製造するための従来の方法は、炭素源として使用できる材料や前処理方法に制限があり、高価な結晶セルロースであったり、仮に安価なセルロース資源であっても、加熱処理やアルカリ処理などの前処理を行う必要があり、比較的高いコストを要するものである。
【0006】
例えば、特許文献1は、古紙を硫酸第1鉄溶液中で蒸煮し、セルラーゼ生産菌を接種可能なセルラーゼ生産用基質を開示している。また、特許文献2は、微粉砕したバガスを苛性アルカリで蒸煮し、次亜塩素酸塩溶液で処理し、セルラーゼ生産菌であるトリコデルマ・リーセイを摂種可能なセルラーゼ生産用基質の製造方法を開示している。
【0007】
また、これら従来の方法で得られるセルラーゼは主としてβ−グルカナーゼを含み、キシラナーゼ活性は低く、バガス及び稲わら等のような、キシランが含まれるセルロース資源の分解能力に劣っている。そのため、天然に存在する多様なセルロース資源の有効利用という目的のためには効果が低い。
【0008】
特許文献3は、トリコデルマ・リーセイに属する変異株を液体培養し、得られたセルラーゼを採取する工程を含むセルラーゼの製造方法を開示している。培地の炭素源としては、セルロースパウダー、セロビオース、濾紙、一般紙類、オガクズ、ふすま、もみがら、バガス、大豆粕、コーヒー粕等化学構造や性質が異なる種々の材料が羅列されている(第0011段落)。
【0009】
しかし、これらのうち培養操作に実際に使用されているものはセロビオース(実施例1)及びアビセル(実施例2)のみであり、その他の材料、即ち天然セルロース材料についてはセルラーゼの生成が確認されていない。
【0010】
特許文献4は、固形構成成分の除去や非揮発成分の濃縮、濃縮物のオートクレーブ処理等の予備処理を行ったライムギの希薄アルコール蒸留廃液を用い、トリコデルマ属に属する微生物を培養してキシラナーゼを製造する方法を開示している。
【0011】
しかし、本技術で炭素源として用いられるライムギは入手が困難であり、更に複雑な前処理が必要であるために高いコストを要し、また、この方法ではβ−グルカナーゼの生成量が却って低下してしまう。
【0012】
他方、小麦ふすまは、小麦を製粉した際に残る小麦の表皮(外皮)である。小麦ふすまには、食物繊維が多く含まれており、シリアル等の食用にされる他、日本酒の醸造の際に麹菌を培養する個体培地に利用されている。
【0013】
また、小麦ふすまは、酵素の製造を目的として微生物を培養するのに用いる液体培地の原料としても利用されている。例えば、特許文献5には、液体培地の炭素源としてキシラン、キシランを含む小麦ふすま、パルプ、バガス、コーンファイバー、稲わら等の農産廃棄物または植物繊維等を用いることが記載されている。
【0014】
しかしながら、本技術では、培養される微生物がバチルス属に属する微生物である。さらに、生成する酵素はキシラナーゼであり、β−グルカナーゼの生成は確認されていない。
【0015】
つまり、トリコデルマ属に属する微生物を用いて、β−グルカナーゼ及びキシラナーゼを同時に高生産するための培地として小麦ふすまを利用することは、今まで知られていない。
【0016】
【特許文献1】特開2003−137901
【特許文献2】特公平5−33984号公報
【特許文献3】特開平9−163980号公報
【特許文献4】特開平11−113568号公報
【特許文献5】特開2004−121257
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【0017】
本発明は上記従来の問題を解決するものであり、その目的とするところは、キシランを含むセルロース資源の分解能力に優れたセルラーゼを低コストで製造することにある。
【課題を解決するための手段】
【0018】
本発明者らは、β−グルカナーゼ及びキシラナーゼを同時に高生産し、セルロース原料を分解(糖化)する酵素の製造方法及びその酵素を製造することを鋭意検討を重ねた結果、液体培地の原料として(a)小麦ふすま及び(b)アンモニア態窒素またはアミノ態窒素を用い、トリコデルマ属に属する微生物を培養することによるβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼを同時に高生産する製造方法及びその酵素を製造するために有用な液体培地を見出した。
【0019】
本発明は、(a)炭素源として小麦ふすま及び(b)窒素源としてアンモニア態窒素またはアミノ態窒素を含む液体培地を用いて、トリコデルマ属に属する微生物を培養する工程を包含するβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法を提供する。
【0020】
ある一形態においては、前記小麦ふすまの前記液体培地中における濃度が3%W/V以上である。
【0021】
ある一形態においては、前記小麦ふすまの前記液体培地中における濃度が4〜15%W/Vである。
【0022】
ある一形態においては、前記アンモニア態窒素またはアミノ態窒素の前記液体培地中における濃度が30〜660mMである。
【0023】
ある一形態においては、前記アンモニア態窒素またはアミノ態窒素の前記液体培地中における濃度が40〜580mMである。
【0024】
ある一形態においては、前記トリコデルマ属に属する微生物が、トリコデルマ・リーセイである。
【0025】
ある一形態においては、培養の過程において前記液体培地に対して炭素源が追加される。
【0026】
また、本発明は、(a)炭素源として小麦ふすま及び(b)窒素源としてアンモニア態窒素またはアミノ態窒素を含む液体培地であって、トリコデルマ属に属する微生物を培養するために用いられる液体培地を提供する。
【0027】
ある一形態においては、前記小麦ふすまは2%W/V以上含有される。
【0028】
ある一形態においては、アンモニア態窒素またはアミノ態窒素は30〜660mM含有される。
【0029】
また、本発明は、前記のいずれかに記載の方法により製造されたβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼを提供する。
【0030】
また、本発明は、前記β−グルカナーゼ及びキシラナーゼを用いることを特徴とするセルロース資源の分解または糖化方法を提供する。
【発明の効果】
【0031】
本発明は、小麦ふすまを有効利用して食品産業廃棄物を減少させるため、環境問題の解決に寄与する。また、セルロース分解酵素であるβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼが同時に高生産されるため、バガスや稲わら等の天然セルロース資源の糖化に極めて有用である。特に、セルロース資源からエタノールを製造するバイオマスエタノール製造に有用である。
【図面の簡単な説明】
【0032】
【図1】小麦ふすま5%の培地における、硫酸アンモニウムの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図2】小麦ふすま5%の培地における、塩化アンモニウムの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図3】小麦ふすま5%の培地における、燐酸二アンモニウムの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図4】小麦ふすま5%の培地における、ロイシンの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図5】小麦ふすま5%の培地における、尿素の濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図6】硫酸アンモニウム480mMの培地における、小麦ふすまの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図7】結晶セルロース1%の培地における、硫酸アンモニウムの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図8】硫酸アンモニウム160mMの培地における、結晶セルロースの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図9】小麦ふすま1%の培地における、硫酸アンモニウムの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図10】小麦ふすま5%の培地における、硫酸アンモニウムの濃度に対する培養上清液の酵素活性の変化を表すグラフである。
【図11】実施例1で得られた小麦ふすま5%の培地及び参考例2で得られた結晶セルロース1%の培地のそれぞれの上清液を用いてビール粕を糖化した場合に、生成したグルコースの濃度を比較したグラフである。
【図12】実施例1で得られた小麦ふすま5%の培地及び参考例2で得られた結晶セルロース1%の培地のそれぞれの上清液を用いて稲わらを糖化した場合に、生成したグルコースの濃度を比較したグラフである。
【発明を実施するための最良の形態】
【0033】
液体培地
本発明の液体培地はセルロース分解酵素を生産する微生物、例えば、トリコデルマ属、アスペルギルス属、アクレモニウム属、スポロトリクム属、ペニシリウム属、タラロマイセス属、フミコラ属、ネオカリマスチクス属、サーモマイセス属又はクロストリディウム属、ストレプトマイセス属に属する微生物が生育する栄養を含んでいる。
【0034】
かかる液体培地は、以下の培地組成を水100mlに溶解及び懸濁した液体培地(一般に、マンデル培地と呼ばれる)を基に調整され、一般に、媒体として水、炭素源として小麦ふすま、及び窒素源としてアンモニア態窒素又はアミノ態窒素を含むものである。好ましい培地組成の一例を以下に示す。
【0035】
培地組成:
小麦ふすま:5g、(NH4)2SO4:0.14g、KH2PO4:1.5g、CaCl2・2H2O:0.03g、MgSO4・7H2O:0.03g、コーンスティープリカー:2mL、ツイーン80:0.1mL、微量元素液(H3BO4 6mg、(NH4)6Mo7O24・4H2O 26mg、FeCl3・6H2O 100mg、CuSO4・5H2O 40mg、MnCl2・4H2O 8mg、ZnSO4・7H2O 200mg液):0.1mL、水:100mLを含む(燐酸又は水酸化ナトリウムでpH4.8に調整)
【0036】
小麦ふすまとは、小麦の外皮と胚芽の混合物をいう。他方、小麦から小麦ふすま(即ち、外皮及び胚芽)を取り除いて微細化したものが小麦粉である。小麦ふすまは、例えば、工業的に食用小麦粉を得る製粉工程の副産物として大量に発生し、容易に入手することができる。そして、このような小麦ふすまは食品の製造副産物であるため、原料段階での品質検査および製造工程管理が厳しく行なわれていることから衛生品質に優れ安全であり、本発明の方法に用いるのに好ましい。
【0037】
小麦ふすまを調製するために用いる小麦の種類としては、特に限定はないが、ホクシン、ふくさやか、農林61号、ナンブコムギ、キタノカオリ、ハルユタカ、春よ恋などを挙げることができる。
【0038】
一般に、小麦ふすまの粒子形状は薄片状である。薄片状の小麦ふすまはそのまま用いてよい。また、これを適宜粉砕して粒子を細かくして用いることも、造粒して粒子の塊を形成させてから用いることも可能である。小麦ふすまの形態には、例えば、大ぶすま、小ぶすま、末粉などがある。食品原料及び健康食品等として市販されているものを用いてもよい。
【0039】
小麦ふすまは液体培地に導入する際に前処理を行ってもよい。好ましい前処理は、例えば、粉砕処理及び脱リグニン処理である。小麦ふすまからリグニンが除去されると強固な細胞壁が崩れ、容易にセルロースが利用できるようになり、酵素が生産され易くなるからである。また、小麦ふすまを粉砕処理することにより、脱リグニン処理をより効率的に行うことができる。
【0040】
脱リグニン処理の方法は特に限定されないが、例えば、水酸化ナトリウムのような強アルカリ性物質の存在下で、または硫酸や燐酸のような強酸性物質の存在下で高温に加熱して分解させる方法、微生物により分解させる方法、高温・高圧下で水熱処理により分解させる方法が挙げられる。処理設備や環境への負荷を考慮すると、高温・高圧下で水熱処理により分解させる方法が好ましい。
【0041】
また、加熱殺菌など液体培地の原料に対して通常行われる前処理を更に行ってもよい。
【0042】
小麦ふすまの液体培地中における濃度は3%W/V以上であることが好ましい。小麦ふすまの濃度が3%W/V未満であるとセルラーゼ、特にβ−グルカナーゼの生成量があまり増大しない場合がある。より好ましくは、小麦ふすまの液体培地中における濃度は4%W/V以上、更に好ましくは5%W/V以上、6%W/V以上、7%W/V以上、8%W/V以上である。
【0043】
液体培地中の小麦ふすまの濃度は高ければ高いほどよい。すなわち、その上限は、液体培地の撹拌混合を行なうことができる限度の量である。液体培地が撹拌できないと微生物は液体培地中に均一に混合されず、培養が正常に進行しないからである。液体培地中の小麦ふすまの濃度の上限は、攪拌装置の性能に応じて20、15、10又は8%W/Vでありうる。一般的には、上記濃度の好ましい範囲は4〜15%W/V、好ましくは5〜10%W/Vである。
【0044】
アンモニア態窒素とはアンモニア又はアンモニア由来のアンモニウム塩に含まれている窒素をいう。また、アミノ態窒素とはアミン又はアミン由来のアミノ化合物に含まれている窒素をいう。アンモニア態窒素又はアミノ態窒素を含む化合物は、例えば、硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、燐酸二アンモニウム、塩化アンモニウム、アンモニア水、尿素、アミノ酸およびその塩(例えば、ロイシン、グルタミン酸ナトリウム)である。
【0045】
これらのうち、窒素源として本発明の液体培地に用いるのに特に好ましい化合物は、硫酸アンモニウムである。その理由は、コストが低く入手が容易だからである。
【0046】
アンモニア態窒素又はアミノ態窒素の液体培地中における濃度は、アンモニウムのモル数として30〜660mMである。好ましくは、40〜580mMである。濃度が30mM未満であるとセルラーゼ、特にβ−グルカナーゼの生成量があまり増大しない場合がある。また、この濃度が660mMを超えると酵素の生産性が低下する。また、アンモニア態窒素又はアミノ態窒素の液体培地中における濃度は、液体培地中の小麦ふすまの濃度に応じて、増減させることが好ましく、例えば、小麦ふすまの濃度が3%W/Vである場合は、コスト等を考慮すると50mMが好ましい。
【0047】
β−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法
本発明に使用するトリコデルマ属に属する微生物はセルロースの糖化に必要なセルラーゼを生産するものであれば特に限定されない。好ましいトリコデルマ属に属する微生物はトリコデルマ属糸状菌であり、具体的にはトリコデルマ・リーセイ又はトリコデルマ・ビリデである。β−グルカナーゼ及びキシラナーゼを同時に高生産する点から、特に好ましくは、トリコデルマ・リーセイである。
【0048】
トリコデルマ・リーセイおよびトリコデルマ・ビリデの菌学的性質は、例えば、イー・ジー・シモンズ,アブストラクト・セカンド・インターナショナル・マイコロジカル・コングレス(E.G. Simmons, Abst. 2nd International Mycological Congress) 米国フロリダ州タンパ,1977年8月,618頁)に記載されている。
【0049】
液体培養には通常の通気撹拌培養装置が用いられ、上記液体培地を使用して、培養温度20〜33℃好ましくは、28〜30℃、培養pH4〜6で、4〜10日間培養する。培養の最初から上記液体培地を使用する場合は、液体培地に含まれる成分(例えば、炭素源及び窒素源)の濃度は、本発明の培養方法における上記成分の初期濃度に相当する。
【0050】
培養の過程において液体培地に対して炭素源を追加してもよい。培養の進行と共に培地中の小麦ふすまは分解されるため、炭素源を補うことによりセルラーゼの生成効率が向上する場合があるからである。追加する炭素源は、天然セルロースを含み、澱粉質等の栄養分が少ない材料が好ましい。追加するのに好ましい炭素源は、小麦ふすま、ビール粕、麦茶抽出粕、紙、果実の絞り粕(特にリンゴ絞り粕)などである。
【0051】
炭素源を追加する場合、追加の形態は連続式でも回分式でもよく、追加後も攪拌混合が可能であるように、追加の時期及び量を調節すればよい。
【0052】
炭素源を追加する場合、培養の過程において、アンモニア態窒素またはアミノ態窒素を必要に応じて、適宜追加してもよい。
【0053】
ついで、要すればこの培養液から遠心分離、濾過などの公知の方法によって菌体を除去して、トリコデルマ属糸状菌培養上清液が得られる。トリコデルマ属糸状菌培養液または培養上清液には目的とするセルラーゼ、すなわちβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼが高濃度で含まれている。
【0054】
得られる培養液または培養上清液のβ−グルカナーゼ活性は30U/mL以上、好ましくは50U/mL以上、より好ましくは60U/mL以上、更に好ましくは70U/mL以上である。また、この培養液または培養上清液のキシラナーゼ活性は25U/mL以上、好ましくは30U/mL以上、より好ましくは40U/mL以上、更に好ましくは50U/mL以上である。培養液または培養上清液のβ−グルカナーゼ活性、キシラナーゼ活性のいずれかが上記下限より低下すると、天然に存在する多様なセルロース資源の有効利用という目的に対する効果が低くなる。
【0055】
尚、上記ヘミセルラーゼ活性は、「oat spelts」由来のキシランを基質とした酵素加水分解により生成した還元糖をDNSと反応させ、540nmの吸光度の増加で定量することができる。
【0056】
より具体的には1%キシラン基質溶液(シグマ社製「Xylan, from oat spelts」を200mM酢酸緩衝液(pH4.5)に溶解)1.9mLに培養液または培養上清液0.1mLを加えて、40℃にて正確に10分間酵素反応を行なわせた後、DNS試薬(0.75%ジニトロサリチル酸、1.2%水酸化ナトリウム、22.5%酒石酸ナトリウムカリウム4水和物、0.3%乳糖1水和物を含む)4mLを加えてよく混合し、反応を停止する。反応停止液に含まれる還元糖量を定量するために、反応停止液を沸騰水浴中で15分間正確に加熱する。続いて、室温まで冷却した後、540nmの吸光度を測定することでキシロースに相当する還元糖量として定量する。1単位のヘミセルラーゼ活性は、40℃、10分間の反応条件下で、1分間に1μmolのキシロースに相当する還元糖を生成する酵素量として表す。
【0057】
本発明でいう「トリコデルマ属に属する微生物を培養する」とは、技術常識のとおり当該微生物を育成する操作をいう。つまり、β−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造を目的として液体培養を行う方法において、少なくとも上記本発明の液体培地の中でトリコデルマ属に属する微生物が育成する過程が存在すれば、その培養方法は本発明の方法に該当する。
【0058】
培養を行うと、液体培地の栄養はトリコデルマ属に属する微生物が消費するために減少する。それゆえ、培養の終期には培地中の炭素源や窒素源の濃度が所定の濃度未満になって、結果として本発明の液体培地に該当しない培地の中でトリコデルマ属に属する微生物が育成するかもしれない。かかる場合でも、例えば培養を開始した時点で、使用する液体培地が炭素源や窒素源を所定の濃度で含有する本発明の液体培地に該当しているときは、少なくとも培養の初期には本発明の液体培地の中でトリコデルマ属に属する微生物が育成するのであるから、その培養方法は当然本発明の方法に該当する。
【0059】
尚、このように特に培養の開始時点から炭素源を高含有させる場合は、上述のとおり、液体培地を攪拌混合する際の利便性を考慮して、小麦ふすまの濃度の上限をある程度制限することが好ましい。
【0060】
反対に、培養の初期には培地中の炭素源又は窒素源の濃度が所定の濃度より低く、本発明の液体培地に該当しない培地を用いて培養が行われていても、例えば、その後これらが追加されて培地中の炭素源又は窒素源の濃度が所定の濃度以上になった場合は、その後は本発明の液体培地の中でトリコデルマ属に属する微生物が育成するのであるから、その培養方法は本発明の方法に該当する。
【0061】
セルロース資源の分解または糖化方法
本発明の方法により得られたβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼは、セルロース資源を分解または糖化するのに有用である。ここでいうセルロース資源は、合成セルロースもしくは天然セルロース資源のどちらでも良い。合成セルロースとは、セルロース粉末として、流通しているものを表す。天然セルロース資源とは、バガス、稲わら、麦わら、ビール粕、木材などが挙げられる。本発明は、β−グルカナーゼおよびキシラナーゼを同時に高生産できるため、特に、バガス、稲わら、麦わら、ビール粕などの天然セルロース資源の糖化に優れている。
【0062】
セルロース資源の分解または糖化方法は、公知の方法を使用すればよく、特に制限されるものではないが、一例としては、基質としてセルロース資源を水性媒体中に懸濁させ、上記培養液または培養上清液を添加し、攪拌または振とうしながら、加温して糖化反応を行う方法が挙げられる。セルロース分解活性を示す上記培養液または培養上清液の代わりにその乾燥物、または乾燥物を水に分散もしくは溶解した液を用いてもよい。
【0063】
セルロース原料は、予め脱リグニンしておくことが好ましい。懸濁方法、攪拌方法、上記混合液の添加方法、添加順序、それらの濃度等の反応条件は、グルコースがより高収率で得られるよう適宜調整される。
【0064】
その際の、反応液のpH及び温度は、酵素が失活しない範囲内であればよく、一般的には、常圧で反応を行う場合、温度は30〜70℃、pHは3〜7の範囲でよい。また、この圧力、温度、pHについても、上記同様、グルコースがより高収率で得られるよう適宜調整されるものであるが、常圧で、酢酸またはリン酸緩衝液中で、温度50〜60℃、pH4〜6の範囲で行うことが好ましい。反応時間は一般に6〜147時間、好ましくは24〜72時間である。
【0065】
セルロースの糖化により、グルコースを含有する水溶液が得られる。得られた水溶液は、必要に応じて、脱色、脱塩、酵素除去等の精製処理を施すことができる。精製方法は、公知の方法であれば特に制限されないが、例えば、活性炭処理、イオン交換樹脂処理、クロマトグラフィー処理、精密ろ過、限外ろ過、逆浸透ろ過等の濾過処理、晶析処理等を使用してもよく、これらを単独で使用しても、2種以上を組み合わせてもよい。
【0066】
上記の方法で精製されたグルコースを主成分とする水溶液は、そのまま使用することができるが、必要に応じて、乾燥により固化させてもよい。乾燥方法は、公知の方法であれば特に制限されないが、例えば、噴霧乾燥、凍結乾燥、ドラム乾燥、薄膜乾燥、棚段乾燥、気流乾燥、真空乾燥等を使用してもよく、これらを単独で使用しても、2種以上を組み合わせてもよい。
【実施例】
【0067】
以下、本発明を実施例によってより具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【0068】
実施例1
小麦ふすま(昭和産業社製)を粉砕処理し、0.3N水酸化ナトリウム水溶液中で121℃、15分のオートクレーブ処理によるリグニンを除去し、充分水洗いした後、乾燥させた。
【0069】
トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させた。マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを脱リグニン処理した小麦ふすま5%(5g/100mL)に置き換えて、また窒素源である硫酸アンモニウムのアミノ態窒素のモル濃度がそれぞれ15mM、35mM、50mM、65mM、80mM、100mMまたは115mMになるように添加して燐酸または水酸化ナトリウムでpH4.8に調整した100mMの液体培地を500mL容バッフル付三角フラスコに用意した。培養したトリコデルマ・リーセイの1白金耳をこの液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、上清液のβ−グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。
【0070】
(酵素活性の測定)
前記で得られた培養液について酵素活性を測定した。
β-グルカナーゼ活性は、メガザイム社製のβ‐グルカナーゼ測定キットを用い、色素標識したβ-グルカンを基質とした酵素分解によって生じた染色断片を吸光度測定した。具体的には、アゾ大麦グルカン基質溶液0.1mLに培養液0.1mLを加えて、40℃にて正確に10分間酵素反応を行なわせた後、停止液〔4%酢酸ナトリウム、0.4%酢酸亜鉛、80%メチルセルソルブを含む(pH5)〕0.6mLを加えて5分放置し、反応を停止した。続いて遠心分離した後、上澄液を590nmの吸光度測定した。1単位のβ-グルカナーゼ活性は、40℃、10分間の反応条件下で、1分間に1μmolのグルコースに相当する還元糖を生成する酵素量として表した。
【0071】
次に、キシラナーゼ活性は、「oat spelts」由来のキシランを基質とした酵素加水分解により生成した還元糖をDNSと反応させ、540nmの吸光度の増加で定量した。より具体的には1%キシラン基質溶液[シグマ社製「Xylan,from oat spelts」を200mM酢酸緩衝液(pH4.5)に溶解]1.9mLに培養液0.1mLを加えて、40℃にて正確に10分間酵素反応を行なわせた後、DNS試薬(0.75%ジニトロサリチル酸、1.2%水酸化ナトリウム、22.5%酒石酸ナトリウムカリウム4水和物、0.3%乳糖1水和物を含む)4mLを加えてよく混合し、反応を停止した。反応停止液に含まれる還元糖量を定量するために、反応停止液を沸騰水浴中で15分間正確に加熱した。続いて、室温まで冷却した後、540nmの吸光度を測定することでキシロースに相当する還元糖量として定量した。1単位のキシラナーゼ活性は、40℃、10分間の反応条件下で、1分間に1μmolのキシロースに相当する還元糖を生成する酵素量として表した。結果を図1に示す。
【0072】
実施例2
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすま5%(5g/100mL)に置き換えて、また窒素源である硫酸アンモニウムを塩化アンモニウムに置き換えてアンモニア態窒素のモル濃度がそれぞれ20mM、40mM、50mM、60mM、80mM、100mMまたは120mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図2に示す。
【0073】
実施例3
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすま5%(5g/100mL)に置き換えて、また窒素源である硫酸アンモニウムを燐酸二アンモニウムに置き換えてアンミニア態窒素のモル濃度がそれぞれ15mM、35mM、50mM、65mM、80mM、100mMまたは115mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図3に示す。
【0074】
実施例4
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすま5%(5g/100mL)に置き換えて、また窒素源である硫酸アンモニウムをロイシンに置き換えてアミノ態窒素のモル濃度がそれぞれ8mM、15mM、23mM、31mM、38mM、46mMまたは53mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図4に示す。
【0075】
実施例5
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすま5%(5g/100mL)に置き換えて、また窒素源である硫酸アンモニウムを尿素に置き換えてアミノ態窒素のモル濃度がそれぞれ17mM、33mM、50mM、67mM、83mMまたは100mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図5に示す。
【0076】
実施例6
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすまに置き換えて濃度が1%、2%、3%、4%、5%、6%または7%になるように添加して、また窒素源である硫酸アンモニウムのアンモニア態窒素のモル濃度が480mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図6に示す。
【0077】
参考例1
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースの濃度を1%とし、窒素源である硫酸アンモニウムのアンモニア態窒素のモル濃度がそれぞれ15mM、35mM、50mM、65mM、80mM、100mMまたは115mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図7に示す。
【0078】
参考例2
マンデル培地の炭素源である結晶セルロース濃度が1%、1.5%、2%、2.5%、3%、3.5%または4%になるように添加して、また窒素源である硫酸アンモニウムのアンモニア態窒素のモル濃度が160mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図8に示す。
【0079】
参考例3
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすま1%(1g/100mL)に置き換えて添加して、また窒素源である硫酸アンモニウムのアンモニア態窒素のモル濃度がそれぞれ15mM、35mM、50mM、65mM、80mM、100mMまたは115mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図9に示す。
【0080】
実施例7
マンデル培地の炭素源である結晶セルロースを実施例1と同様にして得た脱リグニン処理した小麦ふすま5%(5g/100mL)に置き換えて、また窒素源である硫酸アンモニウムのアンモニア態窒素のモル濃度がそれぞれ330mM、420mM、500mM、580mM、660mM、720mMまたは800mMになるように添加して実施例1と同様に液体培地を用意した。トリコデルマ・リーセイQM9414(NBRC 31329)をポテトデキストロース寒天培地上で28℃、7日間培養して胞子を充分形成させ、この1白金耳を液体培地に接種して、28℃、180rpm、7日間振とう培養した。7日目に培養液を遠心分離し、実施例1と同様にしてβ-グルカナーゼ活性およびキシラナーゼ活性を測定した。結果を図10に示す。
【0081】
実施例8
実施例1で得られた培養上清液(5%小麦ふすま、アンモニア態窒素が100mMの硫安)および参考例2で得られた培養上清液(1%結晶セルロース、アンモニア態窒素が100mMの硫安)を用いて、セルロース原料の糖化試験を行った。糖化に供するセルロース原料としては、ビール粕及び稲わらを準備した。これらのセルロース原料は、以下の方法で脱リグニン処理を行った。
【0082】
セルロール原料を微粉砕し、0.3NのNaOHに懸濁して、120℃、15分間処理し、水で充分に洗浄後、乾燥した。セルロース原料の糖化は、セルロース原料:0.3g、培養上清液:9.5mL、1M酢酸バッファー(pH4.8):0.2mLからなる液(セルロース原料3%液)を50℃、pH4.8、48時間、振とうさせて糖化し、生成したグルコースをグルコースCII-テストワコー(和光純薬工業)で測定した。結果を図11および図12に示す。
【産業上の利用可能性】
【0083】
バガスや稲わら等の天然セルロース資源の糖化に極めて有用なβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼを同時に高生産でき、セルロース資源からエタノールを製造するバイオマスエタノール製造に利用できる。
【特許請求の範囲】
【請求項1】
(a)炭素源として小麦ふすま、及び(b)窒素源としてアンモニア態窒素またはアミノ態窒素を含む液体培地を用いて、トリコデルマ属に属する微生物を培養する工程を包含するβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項2】
前記小麦ふすまの前記液体培地中における濃度が3%W/V以上である請求項1に記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項3】
前記小麦ふすまの前記液体培地中における濃度が4〜15%W/Vである請求項1又は2に記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項4】
前記アンモニア態窒素またはアミノ態窒素の前記液体培地中における濃度が30〜660mMである請求項1〜3のいずれかに記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項5】
前記アンモニア態窒素またはアミノ態窒素の前記液体培地中における濃度が40〜580mMである請求項1〜4のいずれかに記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項6】
前記トリコデルマ属に属する微生物が、トリコデルマ・リーセイである請求項1〜5のいずれかに記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項7】
培養の過程において前記液体培地に対して炭素源を追加する請求項1〜6のいずれかに記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項8】
(a)炭素源として小麦ふすま、及び(b)窒素源としてアンモニア態窒素またはアミノ態窒素を含む液体培地であって、トリコデルマ属に属する微生物を培養するために用いられる液体培地。
【請求項9】
前記小麦ふすまを2%W/V以上含有する請求項8に記載の液体培地。
【請求項10】
アンモニア態窒素またはアミノ態窒素を30〜660mM含有する請求項8又は9に記載の液体培地。
【請求項11】
請求項1〜7のいずれか1項に記載の方法により製造されたβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼ。
【請求項12】
請求項11記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼを用いることを特徴とするセルロース資源の分解または糖化方法。
【請求項1】
(a)炭素源として小麦ふすま、及び(b)窒素源としてアンモニア態窒素またはアミノ態窒素を含む液体培地を用いて、トリコデルマ属に属する微生物を培養する工程を包含するβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項2】
前記小麦ふすまの前記液体培地中における濃度が3%W/V以上である請求項1に記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項3】
前記小麦ふすまの前記液体培地中における濃度が4〜15%W/Vである請求項1又は2に記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項4】
前記アンモニア態窒素またはアミノ態窒素の前記液体培地中における濃度が30〜660mMである請求項1〜3のいずれかに記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項5】
前記アンモニア態窒素またはアミノ態窒素の前記液体培地中における濃度が40〜580mMである請求項1〜4のいずれかに記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項6】
前記トリコデルマ属に属する微生物が、トリコデルマ・リーセイである請求項1〜5のいずれかに記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項7】
培養の過程において前記液体培地に対して炭素源を追加する請求項1〜6のいずれかに記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼの製造方法。
【請求項8】
(a)炭素源として小麦ふすま、及び(b)窒素源としてアンモニア態窒素またはアミノ態窒素を含む液体培地であって、トリコデルマ属に属する微生物を培養するために用いられる液体培地。
【請求項9】
前記小麦ふすまを2%W/V以上含有する請求項8に記載の液体培地。
【請求項10】
アンモニア態窒素またはアミノ態窒素を30〜660mM含有する請求項8又は9に記載の液体培地。
【請求項11】
請求項1〜7のいずれか1項に記載の方法により製造されたβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼ。
【請求項12】
請求項11記載のβ−グルカナーゼ及びキシラナーゼを用いることを特徴とするセルロース資源の分解または糖化方法。
【図1】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図11】
【図12】
【図2】
【図3】
【図4】
【図5】
【図6】
【図7】
【図8】
【図9】
【図10】
【図11】
【図12】
【公開番号】特開2011−41522(P2011−41522A)
【公開日】平成23年3月3日(2011.3.3)
【国際特許分類】
【出願番号】特願2009−192216(P2009−192216)
【出願日】平成21年8月21日(2009.8.21)
【出願人】(000000055)アサヒビール株式会社 (535)
【Fターム(参考)】
【公開日】平成23年3月3日(2011.3.3)
【国際特許分類】
【出願日】平成21年8月21日(2009.8.21)
【出願人】(000000055)アサヒビール株式会社 (535)
【Fターム(参考)】
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