マイタケ増収剤、これを用いたマイタケ子実体栽培用培地、マイタケ菌糸体増殖用培地又は培養基ならびにマイタケ栽培方法
【課題】マイタケの人工栽培において、木材等の天然物由来のヘミセルロースを使用することにより効率的な栽培を可能とし、併せて森林資源の有効活用が実現し、併せて、使用済みの培地、培養基の廃棄に際しても環境に過分な負荷を与えない。
【解決手段】ヘミセルロース中の多糖類を放射線の照射若しくは酵素分解による低分子化処理したものを主成分とするマイタケ増収剤と、これを使用したマイタケ培養基又は培地およびマイタケ栽培方法を提供して上記課題を解決する。
【解決手段】ヘミセルロース中の多糖類を放射線の照射若しくは酵素分解による低分子化処理したものを主成分とするマイタケ増収剤と、これを使用したマイタケ培養基又は培地およびマイタケ栽培方法を提供して上記課題を解決する。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本願発明は、マイタケ増収剤とマイタケ栽培用培地又は培養基ならびにマイタケ栽培方法に関し、なお詳しくは低分子化処理したヘミセルロースの有効利用によりマイタケの菌糸体伸長、マイタケの子実体増収を実現する新規なマイタケ栽培技術に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
食用きのこの人工栽培の主流は、今日では種々の制約を受ける原木人工栽培から菌床栽培法に移行し、マイタケについても環境を人工的に制御した施設内における大規模周年栽培が盛んになり、年間を通じて安定供給が行われるようになっている。
マイタケは美味な食用きのことしてその需要も大きいものであるが、エノキタケなどの安価な針葉樹を使用しての人工栽培にくらべ広葉樹を使用するため、生産コストが安価とは言えず、このため栽培期間の短縮、子実体収量の安定化、増収、高品質化が課題となっている。
【０００３】
きのこが旺盛に生育する第一段階としては、きのこの菌糸が培地内で速やかに生育することが必要であり、従来各種の対策が講じられている。
すなわち、例えば特開２０００−２７０６７５には高収量を得る目的で、豆皮と乾燥おからとを混合してなるマイタケ人工栽培用栄養剤が開示されている。
しかしながら、このような収量増加資材は、今後のバイオ燃料の増加が想定されることより、主原料であるおから、豆皮の安定的確保がより困難になるものと想定され、全体的な見地において、必ずしもマイタケ生産コストの低減に結びつくものではない。
【０００４】
また、栽培期間の短縮、子実体の増収や品質の向上の目的で、きのこ菌糸の生育促進物として種々の物質（例えば、ピロロキノリンキノン，Ｃ−アデノシンモノフォスフェート（Ｃ−ＡＭＰ）、酸性プロテアーゼ阻害剤Ｓ−ＰＩ、セレブロシド、安息香酸、アルカロイド類など）が培地に添加される例がある。 そして、これらきのこ栽培後には、大量の廃菌床、すなわち腐朽材（粉）が排出されているが、これらの処分廃棄によって環境への負荷が危惧されている。
【０００５】
本願発明に関して、以下のような先行文献が存在している。
【特許文献１】特開２００３−１６９５４０号公報
【特許文献２】特開２００１−１２００５６号公報
【特許文献３】特開２０００−２７０６７５号公報
【特許文献４】特開平１０−１５２４０９号公報
【特許文献５】特開平０６−１０５６７７号公報
【特許文献６】特開平０５−２１３６８６号公報
【非特許文献１】木材学会誌 Vol.40,P1147-1151(1994)「食用きのこの菌糸体成長に及ぼすカラマツ水抽出物の影響」
【非特許文献２】Radiation physics and Chemistry, Vol.59,P97-101(2000) 「Glowth-promotion of plants with depolymerizedalginates by irradation」
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
ヘミセルロースはセルロースに次ぐバイオマス中の構成多糖類であり、木材成分の２０−３５％を占めていて再生可能な資源である。このようなヘミセルロースの多方面における有効利用の開発は、森林資源の適正な再生活用に結びつくものである。
本願発明は、天然物由来で、実際にきのこによって利用されているヘミセルロースの生理作用を利用して食用きのことして、日常の食生活に不可欠ともなっているマイタケの効率的な栽培を実現して生産者、消費者の双方の需要に対応しようとするものである。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本願発明は、低分子化処理したヘミセルロースを主成分とするマイタケ増収剤を提供して上記従来の課題解決を図ろうとするものである。
【０００８】
本願発明はまた、ヘミセルロースに係る多糖類を低分子化処理したものを主成分とするマイタケ増収剤を提供する。
【０００９】
また、上記いずれかのマイタケ増収剤において、低分子化処理は放射線処理で構成することがある。
【００１０】
さらに、上記いずれかのマイタケ増収において、低分子化処理は酵素分解処理となすことがある。
【００１１】
またさらに、上記のマイタケ増収剤において、放射線処理における放射線は重イオン線、アルファ線、ベータ線等の電子線か、又はエックス線、ガンマ線等の電離性放射線でよい。線種については、工業的によく用いられている電子線やγ線の使用が望ましい。大量に処理する上では、電子線と比較して透過力が大きいγ線によることがある。
【００１２】
上記いずれかのマイタケ増収剤において、多糖類はヘミセルロース中におけるグルコマンナンおよび／又はガラクトマンナンで構成することがある。
【００１３】
本願発明はまた、上記いずれかのマイタケ増収剤を含有するマイタケ子実体栽培用培地又は培養基を提供して従来の課題の解決を図る。
【００１４】
本願発明はさらに、上記いずれかのマイタケ増収剤を含有するマイタケ菌糸体増殖用培地又は培養基を提供する。
【００１５】
さらに、本願発明は、上記いずれかのマイタケ増収剤を配合するきのこ子実体栽培用培地又は培養基に、マイタケの種菌あるいは菌糸体を接種し、これを培養又は栽培するようにしたマイタケ子実体栽培方法を提供して上記従来の課題を解決する。
【００１６】
またさらに、本願発明は、上記いずれかのマイタケ増収剤を配合するきのこ子実体栽培用培地又は培養基に、マイタケの種菌あるいは菌糸体を接種し、これを培養する構成のマイタケ菌糸体培養方法を提供する。
【発明の効果】
【００１７】
以上の構成により本願発明にあっては、マイタケの人工栽培において、木材等の天然物由来のヘミセルロースを使用することにより効率的な栽培を可能とし、併せて森林資源の有効活用が実現できる。また、使用済みの培地、培養基の廃棄に際しても環境に過分な負荷を与える恐れがない。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１８】
本願発明に係るマイタケ増収剤はヘミセルロースを主成分としており、これは植物の細胞壁を構成する多糖類のうち、セルロース、ペクチン以外のものをさしている。したがって、酸性多糖類、ポリガラクツロン酸、アルギン酸は除かれる。
【００１９】
ヘミセルロースは、高分子であることから粘性が高い、若しくは水溶性が低いなどの性質を有しているが、本願発明では低分子化処理によりこれらの点を改善して培地等の内部への速やかな混合を可能としている。ヘミセルロースの低分子化処理は、硫酸、塩酸などによる化学的な処理方法もあるが、酸処理による分解では反応後に酸の中和や余剰の塩を除去する処理などが必要となる。本願発明では、このような化学的酸処理によらず、γ線照射処理、酵素処理により低分子化処理をなすため前記のような問題は発生しない。
【００２０】
本発明における放射線照射量、すなわち線量は、ヘミセルロースの低分子化処理するのに必要十分な線量である必要がある。具体的には、γ線の照射に関しては、その線量率を10kGy/hとして、ほぼ100kGy前後からの照射効果がみられるが、より望ましくは500kGy程度である。
【００２１】
低分子化処理はヘミセルロース、換言すればヘミセルロースにおける多糖類であるが、例えばグルコマンナンを処理した場合、寒天培地（PDA）における添加濃度は、4%を添加した場合、無添加に比べて、菌糸体密度が高くなる。
【００２２】
子実体の形成についても、菌床培地培養において4%添加の場合に収量増加傾向が顕著である。
【００２３】
酵素分解による、低分子化処理は周知の酵素を用いて処理し、反応後に得られる酵素分解糖液を凍結乾燥して粉末化したものを、寒天培地（PDA）の例えば4%添加により、顕著な菌糸増殖活性が得られる。
【実施例】
【００２４】
以下、本願発明を実施例により具体的に説明する。
【００２５】
実施例１：
イ． まず、キシラン（カバ由来のキシランから水溶性キシランを調整）、ガラクトマンナン（ローカストビーン由来）、グルコマンナン（コンニャク由来）および酸性多糖類であるポリガラツロン酸、アルギン酸をγ線照射により低分子化し、これらの照射産物を所定の添加量を含む寒天培地（ＰＤＡ）を作製し、これらの培地上に食用担子菌（エノキタケ、シイタケ、ブナシメジ、マイタケ）を接種し、菌糸伸長活性を調べた。
ロ． 前記多糖類試料をポリエチレン製の袋に詰め、10kGy/hの線量率で100kGy、500kGyのγ線照射を行った。
ハ． あらかじめ上記とは別の寒天培地（ＰＤＡ）上で生育させた各食用担子菌（エノキタケ、シイタケ、ブナシメジ、マイタケ）の菌糸を培地ごと５ｍｍ径のコルクボーラーで打ち抜き、γ線照射処理をなした前記多糖類を、0.25,0.50,0.75,1%をそれぞれ添加したＰＤＡ培地（pH5.6-5.7に調整）に接種した。他方、γ線処理していない前記多糖類を同様量添加した培地を用意して、前記同様に接種した。接種後、各培地は摂氏２４度の暗所で恒温静置培養を行い、エノキタケおよびシイタケは７日培養、ブナシメジは１２日培養、マイタケは１３日の培養をなした。 菌糸伸長の程度をコロニーの大きさを測定することにより比較した。
ニ． 前記培養後、菌糸伸長の程度をコロニーの大きさを測定することにより比較したところ、γ線照射前の多糖類の添加では担子菌の菌糸を伸長させる結果は得られなかったが、γ線照射処理を行った多糖類のうち、グルコマンナンの添加がマイタケの成長に好影響を与えることが明らかとなった。なお、照射は、100kGy、500kGyのいずれでも効果がみられたが、特に500kGyの場合が顕著であった。
ホ． マイタケ以外の担子菌（エノキタケ、シイタケ、ブナシメジ）では有意義な効果は認められなかった。なお、γ線照射処理のグルコマンナンの添加量を４％まで拡げて検討したところ、４％添加の場合、マイタケ菌糸体は無添加の場合に比べて約１．８倍となった。また、目視において、無添加より４％添加の方が菌糸体密度は高かった。
【００２６】
実施例２：
酵素分解したグルコマンナン、ガラクトマンナンのマイタケ菌糸伸長に対する特性を検証した。
イ． まず、マンナーゼ製剤セルロシンＧＭ５（ＨＢＩ社製）を用い、製剤中に含まれるラクトース等の糖類を除くため、限外ろ過により酵素液を透析処理した。
ロ． 各１０ｇのガラクトマンナン、グルコマンナン水溶液（２％）に酵素液（13.8U/ml）を200ml加え、摂氏４０度で６時間分解反応させた。
ハ． 得られた酵素分解糖液を凍結乾燥した。
ニ． 凍結乾燥により得られた粉末状の糖類を0,0.5,1,2,4%添加した寒天培地（ＰＤＡ）を作製して、前記実施例１と同様の比較試験を行ったところ、４％添加の場合、マイタケの菌糸伸長は無添加の場合に比べて約１．８倍となった。
【００２７】
実施例３：
500kGyのγ線照射を行ったグルコマンナンを菌床培地へ添加し、マイタケの試験管栽培をなした。
イ． 菌床培地の構成はブナオガ粉とふすまが乾燥重量比３：１、含水率６５％のものにγ線照射グルコマンナンを乾燥重量で0,0.5,1,2,4%含有するものである。
ロ． 上記の菌床培地は、直径２１ｍｍの試験管に高さが約１３ｃｍとなるように培地を３２ｇ充填した。
ハ． 次いで、各試験管を摂氏１２１度で４０分間滅菌後、ＰＤＡ培地上で培養したマイタケ菌糸体を接種した。
ニ． 接種後、摂氏２２度、湿度７０％の暗所で培養し、原基形成後に湿度９５％の発生室に異動させて子実体の発生を試みたところ、子実体の収量増加傾向が認められた。
【００２８】
実施例４：
次に、菌床培地重量1.25kgを使用して袋栽培試験を行った。
イ． 菌床培地の構成は、培地基材はブナオガ粉、培地添加物はふすまとし、これらを乾燥重量比３：１で含み、乾燥重量比率あたり０％から４％のγ線照射（500kGy）したグルコマンナンを添加した菌床培地を含水率６５％で作製した。
ロ． 完成した上記培地を滅菌後、マイタケ種菌種（森５１号）を接種し、培養を行った。
ハ． 培養４８日経過後、点灯により原基形成を促し、１週間経過後に発生室に異動させて、４日後に袋カットを行った。
ニ． 収穫は管孔が開く直前として発生した子実体の生重量を測定した。なお、各処理区の供試数は１２菌床とした。 子実体の収量は、γ線照射処理したグルコマンナンを添加していないケースでその平均収量は２１５ｇであったのに対して、γ線照射処理したグルコマンナンを４％添加したケースではその平均収量は、図1のグラフに示すように、２３８ｇに達し、γ線照射処理したグルコマンナン添加の効果は明らかであった。
【図面の簡単な説明】
【００２９】
【図１】γ線照射による低分子化グルコマンナン添加割合とマイタケ収量の関係を示すグラフである。
【技術分野】
【０００１】
本願発明は、マイタケ増収剤とマイタケ栽培用培地又は培養基ならびにマイタケ栽培方法に関し、なお詳しくは低分子化処理したヘミセルロースの有効利用によりマイタケの菌糸体伸長、マイタケの子実体増収を実現する新規なマイタケ栽培技術に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
食用きのこの人工栽培の主流は、今日では種々の制約を受ける原木人工栽培から菌床栽培法に移行し、マイタケについても環境を人工的に制御した施設内における大規模周年栽培が盛んになり、年間を通じて安定供給が行われるようになっている。
マイタケは美味な食用きのことしてその需要も大きいものであるが、エノキタケなどの安価な針葉樹を使用しての人工栽培にくらべ広葉樹を使用するため、生産コストが安価とは言えず、このため栽培期間の短縮、子実体収量の安定化、増収、高品質化が課題となっている。
【０００３】
きのこが旺盛に生育する第一段階としては、きのこの菌糸が培地内で速やかに生育することが必要であり、従来各種の対策が講じられている。
すなわち、例えば特開２０００−２７０６７５には高収量を得る目的で、豆皮と乾燥おからとを混合してなるマイタケ人工栽培用栄養剤が開示されている。
しかしながら、このような収量増加資材は、今後のバイオ燃料の増加が想定されることより、主原料であるおから、豆皮の安定的確保がより困難になるものと想定され、全体的な見地において、必ずしもマイタケ生産コストの低減に結びつくものではない。
【０００４】
また、栽培期間の短縮、子実体の増収や品質の向上の目的で、きのこ菌糸の生育促進物として種々の物質（例えば、ピロロキノリンキノン，Ｃ−アデノシンモノフォスフェート（Ｃ−ＡＭＰ）、酸性プロテアーゼ阻害剤Ｓ−ＰＩ、セレブロシド、安息香酸、アルカロイド類など）が培地に添加される例がある。 そして、これらきのこ栽培後には、大量の廃菌床、すなわち腐朽材（粉）が排出されているが、これらの処分廃棄によって環境への負荷が危惧されている。
【０００５】
本願発明に関して、以下のような先行文献が存在している。
【特許文献１】特開２００３−１６９５４０号公報
【特許文献２】特開２００１−１２００５６号公報
【特許文献３】特開２０００−２７０６７５号公報
【特許文献４】特開平１０−１５２４０９号公報
【特許文献５】特開平０６−１０５６７７号公報
【特許文献６】特開平０５−２１３６８６号公報
【非特許文献１】木材学会誌 Vol.40,P1147-1151(1994)「食用きのこの菌糸体成長に及ぼすカラマツ水抽出物の影響」
【非特許文献２】Radiation physics and Chemistry, Vol.59,P97-101(2000) 「Glowth-promotion of plants with depolymerizedalginates by irradation」
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
ヘミセルロースはセルロースに次ぐバイオマス中の構成多糖類であり、木材成分の２０−３５％を占めていて再生可能な資源である。このようなヘミセルロースの多方面における有効利用の開発は、森林資源の適正な再生活用に結びつくものである。
本願発明は、天然物由来で、実際にきのこによって利用されているヘミセルロースの生理作用を利用して食用きのことして、日常の食生活に不可欠ともなっているマイタケの効率的な栽培を実現して生産者、消費者の双方の需要に対応しようとするものである。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本願発明は、低分子化処理したヘミセルロースを主成分とするマイタケ増収剤を提供して上記従来の課題解決を図ろうとするものである。
【０００８】
本願発明はまた、ヘミセルロースに係る多糖類を低分子化処理したものを主成分とするマイタケ増収剤を提供する。
【０００９】
また、上記いずれかのマイタケ増収剤において、低分子化処理は放射線処理で構成することがある。
【００１０】
さらに、上記いずれかのマイタケ増収において、低分子化処理は酵素分解処理となすことがある。
【００１１】
またさらに、上記のマイタケ増収剤において、放射線処理における放射線は重イオン線、アルファ線、ベータ線等の電子線か、又はエックス線、ガンマ線等の電離性放射線でよい。線種については、工業的によく用いられている電子線やγ線の使用が望ましい。大量に処理する上では、電子線と比較して透過力が大きいγ線によることがある。
【００１２】
上記いずれかのマイタケ増収剤において、多糖類はヘミセルロース中におけるグルコマンナンおよび／又はガラクトマンナンで構成することがある。
【００１３】
本願発明はまた、上記いずれかのマイタケ増収剤を含有するマイタケ子実体栽培用培地又は培養基を提供して従来の課題の解決を図る。
【００１４】
本願発明はさらに、上記いずれかのマイタケ増収剤を含有するマイタケ菌糸体増殖用培地又は培養基を提供する。
【００１５】
さらに、本願発明は、上記いずれかのマイタケ増収剤を配合するきのこ子実体栽培用培地又は培養基に、マイタケの種菌あるいは菌糸体を接種し、これを培養又は栽培するようにしたマイタケ子実体栽培方法を提供して上記従来の課題を解決する。
【００１６】
またさらに、本願発明は、上記いずれかのマイタケ増収剤を配合するきのこ子実体栽培用培地又は培養基に、マイタケの種菌あるいは菌糸体を接種し、これを培養する構成のマイタケ菌糸体培養方法を提供する。
【発明の効果】
【００１７】
以上の構成により本願発明にあっては、マイタケの人工栽培において、木材等の天然物由来のヘミセルロースを使用することにより効率的な栽培を可能とし、併せて森林資源の有効活用が実現できる。また、使用済みの培地、培養基の廃棄に際しても環境に過分な負荷を与える恐れがない。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１８】
本願発明に係るマイタケ増収剤はヘミセルロースを主成分としており、これは植物の細胞壁を構成する多糖類のうち、セルロース、ペクチン以外のものをさしている。したがって、酸性多糖類、ポリガラクツロン酸、アルギン酸は除かれる。
【００１９】
ヘミセルロースは、高分子であることから粘性が高い、若しくは水溶性が低いなどの性質を有しているが、本願発明では低分子化処理によりこれらの点を改善して培地等の内部への速やかな混合を可能としている。ヘミセルロースの低分子化処理は、硫酸、塩酸などによる化学的な処理方法もあるが、酸処理による分解では反応後に酸の中和や余剰の塩を除去する処理などが必要となる。本願発明では、このような化学的酸処理によらず、γ線照射処理、酵素処理により低分子化処理をなすため前記のような問題は発生しない。
【００２０】
本発明における放射線照射量、すなわち線量は、ヘミセルロースの低分子化処理するのに必要十分な線量である必要がある。具体的には、γ線の照射に関しては、その線量率を10kGy/hとして、ほぼ100kGy前後からの照射効果がみられるが、より望ましくは500kGy程度である。
【００２１】
低分子化処理はヘミセルロース、換言すればヘミセルロースにおける多糖類であるが、例えばグルコマンナンを処理した場合、寒天培地（PDA）における添加濃度は、4%を添加した場合、無添加に比べて、菌糸体密度が高くなる。
【００２２】
子実体の形成についても、菌床培地培養において4%添加の場合に収量増加傾向が顕著である。
【００２３】
酵素分解による、低分子化処理は周知の酵素を用いて処理し、反応後に得られる酵素分解糖液を凍結乾燥して粉末化したものを、寒天培地（PDA）の例えば4%添加により、顕著な菌糸増殖活性が得られる。
【実施例】
【００２４】
以下、本願発明を実施例により具体的に説明する。
【００２５】
実施例１：
イ． まず、キシラン（カバ由来のキシランから水溶性キシランを調整）、ガラクトマンナン（ローカストビーン由来）、グルコマンナン（コンニャク由来）および酸性多糖類であるポリガラツロン酸、アルギン酸をγ線照射により低分子化し、これらの照射産物を所定の添加量を含む寒天培地（ＰＤＡ）を作製し、これらの培地上に食用担子菌（エノキタケ、シイタケ、ブナシメジ、マイタケ）を接種し、菌糸伸長活性を調べた。
ロ． 前記多糖類試料をポリエチレン製の袋に詰め、10kGy/hの線量率で100kGy、500kGyのγ線照射を行った。
ハ． あらかじめ上記とは別の寒天培地（ＰＤＡ）上で生育させた各食用担子菌（エノキタケ、シイタケ、ブナシメジ、マイタケ）の菌糸を培地ごと５ｍｍ径のコルクボーラーで打ち抜き、γ線照射処理をなした前記多糖類を、0.25,0.50,0.75,1%をそれぞれ添加したＰＤＡ培地（pH5.6-5.7に調整）に接種した。他方、γ線処理していない前記多糖類を同様量添加した培地を用意して、前記同様に接種した。接種後、各培地は摂氏２４度の暗所で恒温静置培養を行い、エノキタケおよびシイタケは７日培養、ブナシメジは１２日培養、マイタケは１３日の培養をなした。 菌糸伸長の程度をコロニーの大きさを測定することにより比較した。
ニ． 前記培養後、菌糸伸長の程度をコロニーの大きさを測定することにより比較したところ、γ線照射前の多糖類の添加では担子菌の菌糸を伸長させる結果は得られなかったが、γ線照射処理を行った多糖類のうち、グルコマンナンの添加がマイタケの成長に好影響を与えることが明らかとなった。なお、照射は、100kGy、500kGyのいずれでも効果がみられたが、特に500kGyの場合が顕著であった。
ホ． マイタケ以外の担子菌（エノキタケ、シイタケ、ブナシメジ）では有意義な効果は認められなかった。なお、γ線照射処理のグルコマンナンの添加量を４％まで拡げて検討したところ、４％添加の場合、マイタケ菌糸体は無添加の場合に比べて約１．８倍となった。また、目視において、無添加より４％添加の方が菌糸体密度は高かった。
【００２６】
実施例２：
酵素分解したグルコマンナン、ガラクトマンナンのマイタケ菌糸伸長に対する特性を検証した。
イ． まず、マンナーゼ製剤セルロシンＧＭ５（ＨＢＩ社製）を用い、製剤中に含まれるラクトース等の糖類を除くため、限外ろ過により酵素液を透析処理した。
ロ． 各１０ｇのガラクトマンナン、グルコマンナン水溶液（２％）に酵素液（13.8U/ml）を200ml加え、摂氏４０度で６時間分解反応させた。
ハ． 得られた酵素分解糖液を凍結乾燥した。
ニ． 凍結乾燥により得られた粉末状の糖類を0,0.5,1,2,4%添加した寒天培地（ＰＤＡ）を作製して、前記実施例１と同様の比較試験を行ったところ、４％添加の場合、マイタケの菌糸伸長は無添加の場合に比べて約１．８倍となった。
【００２７】
実施例３：
500kGyのγ線照射を行ったグルコマンナンを菌床培地へ添加し、マイタケの試験管栽培をなした。
イ． 菌床培地の構成はブナオガ粉とふすまが乾燥重量比３：１、含水率６５％のものにγ線照射グルコマンナンを乾燥重量で0,0.5,1,2,4%含有するものである。
ロ． 上記の菌床培地は、直径２１ｍｍの試験管に高さが約１３ｃｍとなるように培地を３２ｇ充填した。
ハ． 次いで、各試験管を摂氏１２１度で４０分間滅菌後、ＰＤＡ培地上で培養したマイタケ菌糸体を接種した。
ニ． 接種後、摂氏２２度、湿度７０％の暗所で培養し、原基形成後に湿度９５％の発生室に異動させて子実体の発生を試みたところ、子実体の収量増加傾向が認められた。
【００２８】
実施例４：
次に、菌床培地重量1.25kgを使用して袋栽培試験を行った。
イ． 菌床培地の構成は、培地基材はブナオガ粉、培地添加物はふすまとし、これらを乾燥重量比３：１で含み、乾燥重量比率あたり０％から４％のγ線照射（500kGy）したグルコマンナンを添加した菌床培地を含水率６５％で作製した。
ロ． 完成した上記培地を滅菌後、マイタケ種菌種（森５１号）を接種し、培養を行った。
ハ． 培養４８日経過後、点灯により原基形成を促し、１週間経過後に発生室に異動させて、４日後に袋カットを行った。
ニ． 収穫は管孔が開く直前として発生した子実体の生重量を測定した。なお、各処理区の供試数は１２菌床とした。 子実体の収量は、γ線照射処理したグルコマンナンを添加していないケースでその平均収量は２１５ｇであったのに対して、γ線照射処理したグルコマンナンを４％添加したケースではその平均収量は、図1のグラフに示すように、２３８ｇに達し、γ線照射処理したグルコマンナン添加の効果は明らかであった。
【図面の簡単な説明】
【００２９】
【図１】γ線照射による低分子化グルコマンナン添加割合とマイタケ収量の関係を示すグラフである。
【特許請求の範囲】
【請求項１】
低分子化処理したヘミセルロースを主成分とするマイタケ増収剤。
【請求項２】
ヘミセルロースに係る多糖類を低分子化処理したものを主成分とするマイタケ増収剤。
【請求項３】
請求項１又は２記載のマイタケ増収において、低分子化処理は放射線処理および／又は酵素分解処理であることを特徴とするマイタケ増収剤。
【請求項４】
請求項２乃至３いずれか記載のマイタケ増収剤において、多糖類はグルコマンナンおよび／又はガラクトマンナンであることを特徴とするマイタケ増収剤。
【請求項５】
請求項１乃至４記載のマイタケ増収剤を含有することを特徴とするマイタケ子実体栽培用培地又は培養基。
【請求項６】
請求項１乃至４記載のマイタケ増収剤を含有することを特徴とするマイタケ菌糸体増殖用培地又は培養基。
【請求項７】
請求項１乃至４記載のマイタケ増収剤を培地調製時に配合するきのこ人工栽培用培地又は培養基に、マイタケの種菌あるいは菌糸体を接種し、これを培養又は栽培することを特徴とするマイタケ子実体栽培方法。
【請求項８】
請求項１乃至４記載のマイタケ増収剤を配合するきのこ人工栽培用培地又は培養基に、マイタケの種菌あるいは菌糸体を接種し、これを培養することを特徴とするマイタケ菌糸体増殖方法。
【請求項１】
低分子化処理したヘミセルロースを主成分とするマイタケ増収剤。
【請求項２】
ヘミセルロースに係る多糖類を低分子化処理したものを主成分とするマイタケ増収剤。
【請求項３】
請求項１又は２記載のマイタケ増収において、低分子化処理は放射線処理および／又は酵素分解処理であることを特徴とするマイタケ増収剤。
【請求項４】
請求項２乃至３いずれか記載のマイタケ増収剤において、多糖類はグルコマンナンおよび／又はガラクトマンナンであることを特徴とするマイタケ増収剤。
【請求項５】
請求項１乃至４記載のマイタケ増収剤を含有することを特徴とするマイタケ子実体栽培用培地又は培養基。
【請求項６】
請求項１乃至４記載のマイタケ増収剤を含有することを特徴とするマイタケ菌糸体増殖用培地又は培養基。
【請求項７】
請求項１乃至４記載のマイタケ増収剤を培地調製時に配合するきのこ人工栽培用培地又は培養基に、マイタケの種菌あるいは菌糸体を接種し、これを培養又は栽培することを特徴とするマイタケ子実体栽培方法。
【請求項８】
請求項１乃至４記載のマイタケ増収剤を配合するきのこ人工栽培用培地又は培養基に、マイタケの種菌あるいは菌糸体を接種し、これを培養することを特徴とするマイタケ菌糸体増殖方法。
【図１】
【公開番号】特開２００９−２０１４６５（Ｐ２００９−２０１４６５Ａ）
【公開日】平成２１年９月１０日（２００９．９．１０）
【国際特許分類】
【出願番号】特願２００８−４９６９２（Ｐ２００８−４９６９２）
【出願日】平成２０年２月２９日（２００８．２．２９）
【出願人】（５０１１８６１７３）独立行政法人森林総合研究所 (91)
【出願人】（５０５３７４７８３）独立行政法人 日本原子力研究開発機構 (727)
【Ｆターム（参考）】
【公開日】平成２１年９月１０日（２００９．９．１０）
【国際特許分類】
【出願日】平成２０年２月２９日（２００８．２．２９）
【出願人】（５０１１８６１７３）独立行政法人森林総合研究所 (91)
【出願人】（５０５３７４７８３）独立行政法人 日本原子力研究開発機構 (727)
【Ｆターム（参考）】
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